Registration Dossier

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Diss Factsheets

Administrative data

Key value for chemical safety assessment

Genetic toxicity in vitro

Description of key information

Compte-tenu de sa solubilité dans l’eau d’environ 5.0 g/L, la substance à enregistrer: acétylacétonate de Nickel (substance cible) se dissocie presque entièrement en espèces chargées (les deux substances sources): les anions organiques d’acétylacétone (aussi appelé 2,4-pentanedione) et les cations métalliques de Nickel divalents (Ni2+). La méthode d’évaluation de la génotoxicité in vitro de la substance à enregistrer peut donc être basée sur une approche par références croisées (« Read across »), en considérant la génotoxicité de la partie organique et de la partie inorganique séparément dans un premier temps, et en conjonction par la suite pour l’évaluation finale. 

 

Les données existante sur la mutagénicité bactérienne (Test de Ames) de la partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n’indique aucune propriétés mutagènes (Ballantyne & Cawley, 2001 et Gava et al., 1989). Les données existante sur la mutagénicité chez des gènes de mammifères de la partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n’indique aucune propriétés mutagènes, (Test CHO sur le gène HGPRT issus d’ovaires de hamster chinois, Vergnes & Ballantyne 2000). Les données existante sur la capacité à induire des dommages à l’ADN in vitro de la partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n’indique aucune propriétés génotoxiques (Tests avec Bacillus subtilus, Matsui et al., 1999).

Une synthèse des données existantes sur les propriétés génotoxiques de la partie inorganique (Nickel divalent) est présentée dans le rapport de Fay et al., 2005. Les information suivantes existent:

Un certain nombre d'études ont examiné la génotoxicité de divers composés du nickel. Différentes études suggèrent que le nickel ne modifie pas la fréquence des mutations génétiques chez les organismes non mammaliens (Arlauskas et al., 1985, Green et al., 1976; Marzin et Phi, 1985; Rasmuson, 1985; Wong, 1988). certaines études ont trouvé des mutations génétiques (Pikalek & Necasek 1983). Des résultats mitigés pour des mutations génétiques ont été trouvés dans des systèmes de test de mammifères. Des augmentations de la fréquence des mutations génétiques ont été observées au locus HGPRT dans les cellules V79 du hamster chinois (Hartwig & Beyersmann 1989, Miyaki et al., 1979) mais pas dans les cellules ovariennes du hamster chinois (Hsie et al., 1979). Une augmentation de la fréquence de mutation génique a également été observée dans les cellules AS52 de l'ovaire de hamster chinois (locus grp) (Fletcher et al., 1994), les cellules de lymphome de souris (Amacher & Paillet 1980, McGregor et al., 1988) et le sarcome de souris infecté par le virus. des cellules (Biggart & Murphy 1988, Biggart et al., 1987). La fréquence de mutation génique n'a pas été affectée dans les tissus respiratoires transgéniques de souris et de rats après une exposition par inhalation au subsulfure de nickel (Mayer et al., 1998).

Certaines données suggèrent que le nickel est clastogène et peut endommager l'ADN. Des lacunes chromosomiques ou des aberrations chromosomiques ont été signalées dans des essais in vitro utilisant des cellules de hamster (Larramendy et al., 1981, Sen & Costa, 1986, Sen et al., 1987), des lymphocytes humains (Larramendy et al., 1981) et des cellules épithéliales bronchiques humaines (Lechner et al., 1984). Des augmentations de l'échange de chromatides sœurs ont été observées dans des essais in vitro sur des lymphocytes humains (Andersen 1983, Arrouijal et al., 1992, Larramendy et al., 1981, Ohno et al., 1982, Saxholm et al., 1981, Wulf 1980) et des cellules de hamster (Larramendy et al., 1981, Saxholm et al., 1981). L'altération de l'ADN consistait en une fragmentation des cellules pulmonaires et muqueuses nasales de la souris (Mayer et al., 1998) et en une liaison croisée des protéines et / ou des cassures monocaténaires des cellules ovariennes de hamster chinois (Hamilton-Koch et al 1986, Patierno & Costa, 1985). Cependant, les ruptures et dommages monocaténaires de l'ADN (évalués à l'aide de l'analyse des comètes) n'ont pas été retrouvés dans les fibroblastes diploïdes humains (Hamilton-Koch et al., 1986) ou dans les muqueuses gastriques humaines (Pool-Zobel et al., 1994).

En conclusion de ces données et observations, conformément au CLP (règlement (CE) n ° 1272/2008 du Parlement européen et du Conseil), la partie inorganique de la substance à enregistrer (Nickel divalent) doit être considéré comme mutagène pour les cellules germinales catégorie 2 (tableau 3.5.1. du réglement CLP) étant donné que des résultats positifs lors d'essais in vitro de mutagénicité sur des cellules de mammifères ont été obtenus.

Pour l'évaluation de la génotoxicité de la substance à enregistrer (acétylacétonate de Nickel), une approche par référence croisée est utilisée en considérant la substance à enregistrer comme le mélange de sa partie organique (2,4 -pentanedione) et inorganique (Nickel). Pour ce faire, les masses moléculaires (MM) de l’acétylacétone (100.12 g/mole), du Nickel (58.69 g/mole) et de l’acétylacétonate de Nickel (256.9 g/mole) ont été utilisées. Ainsi, compte-tenu de la structure moléculaire de l’acétylacétone (C5H8O2) et de celle de l’acétylacétonate de Nickel (Ni(C5H7O2)2), la concentration de chacun des 2 composants du mélange ont été calculée de la manière suivante :

 

-            Concentration de l’acétylacétone dans le mélange : ((100.12 x 2)/256.9)*100 = 77.94%

-            Concentration du Ni dans le mélange : (65.38/263.61)*100 = 22.85%

La partie organique de la substance à enregistrer (2,4 -pentanedione) est considérée comme n'ayant pas de propriétés mutagènes alors que sa partie inorganique (Nickel) est considéré comme mutagène pour les cellules germinales catégorie 2. Conformément au CLP (règlement (CE) n ° 1272/2008 du Parlement européen et du Conseil; section 3.5.3.1.1. et tableau 3.5.2), la substance à enregistrer (acétylacétonate de Nickel) doit ètre considérée comme mutagène pour les cellules germinales catégorie 2, étant donné que le Nickel appartient à cette même classification et qu'il représente plus de 1% de la substance à enregistrer, elle-même étant considéré comme un mélange de Nickel et de 2,4 -pentanedione

Références :

 

Amacher DE, Paillet SC. 1980. Induction of trifluorothymidine resistant mutants by metal ions in L5178Y/TK+/- cells. Mutation Research, 78:279-288.

 

Andersen O. 1983. Effects of coal combustion products and metal compounds on sister chromatid exchange (SCE) in a macrophage cell line. Environmental Health Perspectives, 47:239-253

 

Arlauskas A, Baker RS, Bonin AM, et al. 1985. Mutagenicity of metal ions in bacteria. Environmental Reseacrh, 36:379-388.

 

Arrouijal FZ, Marzin D, Hildebrand HF, et al. 1992. Differences in genotoxic activity of α-Ni3S2 on human lymphocytes from nickel-hypersensitized and nickel-unsensitized donors. Mutagenesis 7(3):183187.

 

Ballantyne B, Cawley TJ (2001).Toxicology update: 2,4-Pentanedione.Journal of Applied Toxicology 21, 165–171.

 

Biggart NW, Murphy E Jr. 1988. Analysis of metal-induced mutations altering the expression or structure of a retroviral gene in a mammalian cell line. Mutation Research, 198:115-130.

 

Biggart NW, Gallick GE, Murphy EC Jr. 1987. Nickel-induced heritable alterations in retroviral transforming gene expression. Journal of Virology, 61:2378-2388.

 

Fay M, Wilbur S, Abadin H, Ingerman L, Swarts SG (2005). Toxicological profile for Nickel. US Department of Health and Human Services. Public Health Service. Agency for Toxic Substances and Disease Registry.351 p.

 

Fletcher GG, Rossetto FE, Turnbull JD, et al. 1994. Toxicity, uptake, and mutagenicity of particulate and soluble nickel compounds. Environmental Health Perspectives 102(suppl 3):69-79.

 

Gava C, Perazzolo M, Zentilin L, Levis AG, Corain B, Bombi GG, Palumbo M, Zatta P (1989). Genotoxic Potentiality and DNA-Binding Properties of Acetylacetone, Maltol, and Their Aluminium (III) and Chromium (III) Neutral Complexes. Toxicology and Environmental Chemistry 22: 149-157.

 

Green MHL, Muriel WJ, Bridges BA. 1976. Use of simplified fluctuation test to detect low levels of mutagens. Mutation Research, 38:33-42.

 

Hamilton-Koch W, Snyder RD, Lavelle JM. 1986. Metal-induced DNA damage and repair in human diploid fibroblasts and Chinese hamster ovary cells. Chemical Biological Interactions, 59:17-28.

 

Hartwig A, Beyersmann D. 1989. Enhancement of UV-induced mutagenesis and sister-chromatid exchanges by nickel ions in V79 cells: Evidence for inhibition of DNA repair. Mutation Research 217:65-73.

 

Hsie TH, Yu CP, Oberdörster G. 1999b. Modeling of deposition and clearance of inhaled Ni compounds in the human lung. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 30(1):18-28.

 

Larramendy ML, Popescu NC, DiPaolo JA. 1981. Induction by inorganic metal salts of sister chromatid exchanges and chromosome aberrations in human and Syrian hamster cell strands. Environmental and Molecular Mutagenesis, 3:597-606.

 

Lechner JF, Tokiwa T, McClendon IA, et al. 1984. Effects of nickel sulfate on growth and differentiation of normal human bronchial epithelial cells. Carcinogenesis 5:1697-1703.

 

Marzin DR, Phi HV. 1985. Study of the mutagenicity of metal derivatives with Salmonella typhimurium TA102. Mutation Research, 155:49-51.

 

Mayer C, Klein RG, Wesch H, et al. 1998. Nickel subsulfide is genotoxic in vitro but shows no mutagenic potential in respiratory tract tissues of BigBlue(TM) rats and Muta(TM) Mouse mice in vivo after inhalation. Mutation Research, 420(1-3):85-98.

 

Matsui S. Yamamoto R. Yamada H (1989).The Bacillus subtilis/microsome rec-assay for the detection of DNA damaging substances which may occur in chlorinated and ozonated waters. Water Science and Technology 21: 875-887.

 

McGregor DB, Brown A, Cattanch P, et al. 1988. Responses of the L5178Y TK+/TK- mouse lymphoma cell forward mutation assay. III. 72 coded chemicals. Environmental and Molecular Mutagenesis 12:85-154.

 

Miyaki M, Akamatsu N, Ono T, et al. 1979. Mutagenicity of metal cations in cultured cells from Chinese hamster. Mutation Research, 68:259-263.

 

Ohno H, Hanaoka F, Yamada M. 1982. Inducibility of sister chromatid exchanges by heavy metal ions. Mutation Research, 104:141-145.

 

Patierno SR, Costa M. 1985. DNA-protein cross-links induced by nickel compounds in intact cultured mammalian cells. Chemical Biological Interactions, 55:75-91.

 

Pikalek P, Necasek J. 1983. The mutagenic activity of nickel in Cornebacterium sp. Folia Microbiologia 26:17-21.

Pool-Zobel BL, Lotzmann N, Knoll M, et al. 1994. Detection of genotoxic effects in human gastric and nasal mucosa cells isolated from biopsy samples. Environmental and Molecular Mutagenesis, 24:23-45

 

Rasmuson A. 1985. Mutagenic effects of some water-soluble metal compounds in a somatic eye-color test system in Drosophila melanogaster. Mutation Research 157:157-162.

 

Saxholm HJK, Reith A, Brogger A. 1981. Oncogenic transformation and cell lysis in C3H/10T1/2 cells and increased sister chromatid exchange in human lymphocytes by nickel subsulfide. Cancer Research, 41:4136-4139.

 

Sen P, Costa M. 1986. Pathway of nickel uptake influences its interaction with heterochromatic DNA. Toxicological and Applied Pharmacology, 84:278-285.

 

Sen P, Conway K, Costa M. 1987. Comparison of the localization of chromosome damage induced by calcium chromate and nickel compounds. Cancer Research, 47:2142-2147.

 

Vergnes JS, Ballantyne B (2000). In vivo and in vitro genetic toxicology studies with 2,4-pentanedione. Toxic Substances Mechanisms 3: 151-175.

 

Wong PK. 1988. Mutagenicity of heavy metals. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology, 40:597-603.

 

Wulf HC. 1980. Sister chromatid exchanges in human lymphocytes exposed to nickel and lead. Danish Medical Bulletin, 27:40-42.

 

 

 

 

  

Link to relevant study records

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Endpoint:
in vitro DNA damage and/or repair study
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
weight of evidence
Study period:
Jusqu'à 1989
Reliability:
4 (not assignable)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
other: Détails essentiels manquant, pas de procédure de test standard. Référence de littérature disponible
Qualifier:
according to guideline
Guideline:
other: Voir la section "Principles if other than guidelines"
Principles of method if other than guideline:
Test Rec - méthode döcrite dans Kada et al. (1972).
- Kada T, Tutikawa K, Sadaie Y (1972). In vitro and host-mediated "rec-assay" procedures for screening chemical mutagens; and phloxine, a mutagenic red dye detected. DOI 10.1016/0027-5107(72)90177-7 PMID 4342303 Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis 16(2):165-74.
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
Bacillus subtilis recombination assay
Specific details on test material used for the study:
Non disponible
Target gene:
Pas applicable
Species / strain / cell type:
bacteria, other: bacillus subtilis M45 (arg-, trp-, recE-), H17 (arg-, trp-, recE+)
Details on mammalian cell type (if applicable):
Pas applicable
Additional strain / cell type characteristics:
other: arg-, trp-, recE-/+
Metabolic activation:
with and without
Metabolic activation system:
Mélange S9
Test concentrations with justification for top dose:
Non disponible
Vehicle / solvent:
Incertitude à savoir si du DMSO a été utilisé ou si la substance pure a été utilisée.
Details on test system and experimental conditions:
Le milieu de croissance utilisé était un bouillon nutritif (3 g d'extrait de bœuf, 5 g de peptone, 5 g d'extrait de levure, 1000 ml d'eau) ajusté à pH 7.0. Les spores de M45 et H17 ont été conservées dans le milieu de spores de Schae-fer. Les deux souches ont d'abord été pré-cultivées dans le milieu de croissance dans des tubes à trois tubes à 37 °C. Les tubes ont été secoués à une vitesse de 71 tour/min dans un bain d'eau Monod (Fuji Seisakusho Co., Mode! D4-40C). La croissance de la bactérie a été mesurée avec un appareil de mesure de la turbidité (colorimètre photoélectrique Klett-Summerson, modèle 800-3). Des portions de préculture en phase logarithmique ont été diluées avec du tampon Tris-HCl pour arriver à une turbidité de 0.4 et 0.8, respectivement, pour H17 (ci-après dénommé Rec ') et M45 (ci-après dénommé Rec-). Pour les tests potentiels de dommage direct de l'ADN, 0.3 ml de culture diluée a été mélangé avec 0.6 ml de solution d'essai et 0.1 ml de tampon phosphate de sodium dans un tube Monod et maintenu pendant 1 heure à 37 °C. Lorsque l'activation métabolique était nécessaire, 0.1 ml de mélange S9 a remplacé le tampon phosphate. Après une période d'interaction d'une heure entre les bactéries et la solution d'essai avec ou sans le mélange S9, 5.0 ml de bouillon nutritif a été ajouté et le tube de Monod secoué dans le bain-marie. Lorsque la turbidité d'un témoin, non exposé à des substances endommageant l'ADN, a atteint 100 unités (équivalent à 10 unités formatrices de colonies ml-1), tous les tubes de Monod ont été retirés du bain et leurs turbidités ont été mesurées. les bactéries ne peuvent pas reproduire l'ADN en raison des faibles niveaux de nutriments, et elles sont dans la phase dite stationnaire.
Rationale for test conditions:
Non communiqué
Evaluation criteria:
Un composé a été considéré comme ayant un potentiel de dommage à l'ADN si la survie relative (SR) de la protéine REC + était supérieure à 12.0% et l'analyse de Probit-S a donné une valeur supérieure à 0.20.
Statistics:
Analyse de Probit-S
Species / strain:
bacteria, other: Bacillus subtilis strain M45 (arg-, trp-, recE-), H17 (arg-, trp-, recE+)
Metabolic activation:
with
Genotoxicity:
ambiguous
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Species / strain:
bacteria, other: Bacillus subtilis strain M45 (arg-, trp-, recE-), H17 (arg-, trp-, recE+)
Metabolic activation:
without
Genotoxicity:
negative
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
not specified
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Additional information on results:
Un composé a été considéré comme ayant un potentiel de dommage à l'ADN si la survie relative (RS) de la protéine rec + était supérieure à 12,0% et l'analyse de probit a donné une valeur supérieure à 0,200.
- dans les tests sans activation métabolique la RS était de 10,21% et la valeur de S-probit était de 0,050: résultat négatif.
- dans les tests avec activation métabolique, les valeurs étaient de 12,25% et de 0.076, respectivement: résultat ambigu.
Conclusions:
Interprétation des résultats:
- résultat ambigu avec l'activation métabolique
- test négatif sans activation métabolique

Le test a montré un résultat ambigu avec et un résultat négatif sans activation métabolique pour la partie organique de la substance à enregistrer.
Executive summary:

Le procédé de dosage rec-Bacillus subtilis / microsome liquide a été appliqué à la 2,4-pentanedione (acétylacétone). La souche H17 de Bacillus subtilis (arg-, trp-, recE +) a été utilisée comme souche compétente pour la recombinaison. Un dérivé de cette souche, M45 (arg-, trp-, recE-), a été utilisé comme souche défectueuse par recombinaison. Les deux souches ont été incubées dans une suspension liquide et la croissance des bactéries a été mesurée à l'aide d'un turbidimètre. L'incubation des deux souches s'est faite à diverses concentrations de la substance testée avec et sans activation métabolique (mélange de S9). Divers composés ont été utilisés comme contrôles positifs et négatifs.

Résultat: Un composé a été considéré comme ayant un potentiel de dommage à l'ADN si la survie relative (RS) de la protéine rec + était supérieure à 12,0% et l'analyse S-probit donnait une valeur supérieure à 0.200. Dans les tests sans activation métabolique (sans mélange S9) la survie relative était de 10,21% et la valeur de S-probit était de 0.050 indiquant donc un résultat négatif concernant la génotoxicité de la 2,4-pentanedione. Dans les tests avec activation métabolique (avec mélange S9), les valeurs étaient de 12.25% et 0.076, respectivement indiquant un résultat ambigu quant à la génotoxicité de la 2,4 -pentanedione.

Endpoint:
in vitro gene mutation study in bacteria
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
weight of evidence
Study period:
Jusqu'à 2001
Reliability:
2 (reliable with restrictions)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
study well documented, meets generally accepted scientific principles, acceptable for assessment
Qualifier:
equivalent or similar to guideline
Guideline:
OECD Guideline 471 (Bacterial Reverse Mutation Assay)
Deviations:
no
Principles of method if other than guideline:
Test réalisé selon les protocoles standards par inclusion d'un système d'activation métabolique (S9-Mix issu de foies de rats Sprague-Dawley prétraités avec Aroclor 1254).
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
bacterial reverse mutation assay
Specific details on test material used for the study:
- Nom du matériau d'essai: 2,4-Pentanedione
- Etat physique: liquide
- Stabilité dans les conditions d'essai: stable
- Pureté: 99.2%
Target gene:
Pas applicable
Species / strain / cell type:
other: S. typhimurium, TA 98, 100, 1535, 1537, 1538
Additional strain / cell type characteristics:
not applicable
Metabolic activation:
with
Metabolic activation system:
Mélange S9
Test concentrations with justification for top dose:
0.3 -30 mg/plaque (0.3, 1.0, 3.0, 10.0 et 30.0 mg/plaque)
Vehicle / solvent:
Eau
Untreated negative controls:
no
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
other: 4-nitro-o-phenylenediamine
Untreated negative controls:
no
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
sodium azide
Remarks:
TA100 sans S9
Untreated negative controls:
no
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
9-aminoacridine
Remarks:
TA1537 sans S9
Untreated negative controls:
no
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
other: 2-aminoanthracène
Remarks:
Toutes les souches avec S9
Details on test system and experimental conditions:
Mode d'application: en agar (incorporation de plaque)

Durée:
- Durée d'exposition: 24 et 48 h à 37 ° C

Nombre de réplication: 3

Détermination de la cytoxicité:
- Méthode: inhibition de la croissance
Rationale for test conditions:
Non communiqué
Evaluation criteria:
Les substances testéesi qui produisent au moins une multiplication par 2 et proportionnelle à la dose des colonies de mutants par rapport à la valeur de contrôle (solvant) sont considérés comme étant des mutagènes bactériens et des mutagènes suspects de mammifères.
Statistics:
Non communiqué
Species / strain:
other: S. typhimurium T98, 100, 1535, 1537, 1538
Metabolic activation:
with and without
Genotoxicity:
negative
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
not applicable
Positive controls validity:
valid
Additional information on results:
Facteurs confondants spécifiques au test:
- Effets du pH: aucun rapporté
- Effets de l'osmolalité: aucun rapporté
- Évaporation du milieu: aucune signalée
- Solubilité dans l'eau: soluble
- Précipitation: aucune signalée
- Autres effets confondants: aucun rapporté


Étude de définition/de dépistage: oui, en dehors des BPL


Comparaison avec les données de contrôle historique: oui, conforme
Remarks on result:
other: Toutes les souches/types cellulaires testées
Conclusions:
Interprétation des résultats:test négatif

D'après les résultats, il est conclu que la partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n'est pas mutagène dans les conditions du test.
Executive summary:

La 2,4-pentanedione (pure à 99,2%) a été testée pour son activité mutagène potentielle en utilisant le test de mutagénicité bactérienne Salmonella / microsome (test d'Ames).

Le test a été réalisé selon les protocoles standards en incluant un système d'activation métabolique (Mélange S9 issu de foies de rats Sprague-Dawley prétraités avec Aroclor 1254). Dans les essais préliminaires avec la souche TA 100 seulement, une concentration de 97.4 mg/plaque s'est avérée inhiber complètement la croissance bactérienne. La concentration inférieure suivante de 30 mg/plaque a montré des effets toxiques. En conséquence, les doses sélectionnées sur la base de ces essais étaient de 0.3, 1.0, 3.0, 10.0 et 30.0 mg/plaque. Les incubations ont été effectuées en triplicat à 37 °C pendant 24 à 48 heures. Les plaques ont été examinées pour l'état de leurs mates bavtériennes de fond et la croissance a été enregistrée comme confluente (non toxique), clairsemée (modérément toxique) ou absente (toxique). Le solvant de choix étaient l'eau. Des contrôles simultanés de solvant et positifs ont été testés dans chaque test. Les substances utilisés dans les contrôles positifs sans mélange S9 étaient: 0.01 mg 4-nitro-ophénylènediamine/boîte pour TA98 et TA1538, 0.01 mg d'azoture de sodium pour TA100, 0.06 mg de 9-aminoacrididine/boîte pour TA1537 et avec S9-mélange 0.01 mg de 2-aminoanthracène pour toutes les souches.

La 2,4-pentanedione n'a pas produit de doublement selon une courbe dose-réponse du nombre de révertants/plaque dans les souches de Salmonella typhimurium utilisées ni en l'absence, ni en présence du système d'activation métabolique. La sélection des doses a semblé se situer dans une gamme appropriée, car dans les tests avec et sans activation métabolique, la toxicité envers les bactéries a été observée à 30 mg/boîte (dose la plus élevée testée) avec toutes les souches. Des contrôles positifs ont produit des effets mutagènes démontrant la fonctionnalité du système de test. On peut donc conclure que la partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n'est pas mutagène dans les conditions du test.

Endpoint:
in vitro gene mutation study in bacteria
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
weight of evidence
Study period:
Jusqu'à 1989
Reliability:
2 (reliable with restrictions)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
study well documented, meets generally accepted scientific principles, acceptable for assessment
Qualifier:
equivalent or similar to guideline
Guideline:
OECD Guideline 471 (Bacterial Reverse Mutation Assay)
Deviations:
no
Principles of method if other than guideline:
Méthode: autre: selon le protocole initialement décrit par Bruce Ames et al. Les tests de mutagénicité ont été réalisés sur une batterie de souches de S. typhimurium (TA92, T.498, TA100, TA104) selon le protocole initialement décrit par Ames. Le volume total des plaques était de 22 ml, y compris 20 ml de milieu de culture et environ 2 ml d'agar agar.
Les substances testées ont été introduites sous forme de solution aqueuse ou diluées dans du DMSO, en utilisant dans tous les cas un volume de 0.1 ml.
Le nombre de révertants spontanés/plaque était dans les limites suivantes: TA92 (40-70). TA98 (7010), T.4100 (100-160), TA104 (400-700).

Une augmentation de deux fois du nombre de révertants dans les plaques traitées par rapport aux contrôles a été considérée comme une réponse positive significative. Dans chaque essai, de l'eau, du DMSO et du nitrate aqueux de chrome (III) ont été testés comme témoins négatifs. Du dichromate de potassium K2Cr2O7 (10 μg/plaque) et méthylméthanesulfonate (2 μg/plaque) ont été utilisés comme témoins positifs pour les souches TA92 (150-320, 2200-34 000 révertants induits, respectivement), TA100 (200-340, 2100-2300), TA 104 (1050-1 610. 9000-10 000) et de l'hycantone (20 μg/plaque) pour TA98 (150-760). Deux ou trois répétitions par dose testöe ont été utilisées; chaque expérience a été répétée trois fois.
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
bacterial reverse mutation assay
Specific details on test material used for the study:
Non communiqué
Target gene:
Pas applicable
Species / strain / cell type:
other: S. typhimurium souches TA92, TA98, TA100 et TA 104
Details on mammalian cell type (if applicable):
Pas de données
Additional strain / cell type characteristics:
not applicable
Metabolic activation:
without
Metabolic activation system:
Aucun
Test concentrations with justification for top dose:
gamme de doses: 1.9-48 μmol/plaque
Vehicle / solvent:
Le volume total des plaques était de 22 ml, y compris 20 ml de milieu de culture et environ 2 ml d'agar supérieur; il a été rapporté que les substances étaient appliquées sous la forme de solutions aqueuses ou dans du DMSO à un volume final de 0.1 ml. La publication ne précise pas quel solvant a été utilisé pour le 2,4-pentanedione.
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
yes
Positive controls:
yes
Positive control substance:
methylmethanesulfonate
Remarks:
Souches TA92, TA100, TA 104
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
yes
Positive controls:
yes
Positive control substance:
other: Hycantone
Remarks:
Souche TA92
Details on test system and experimental conditions:
Test de Ames
Rationale for test conditions:
Non disponible
Evaluation criteria:
Une réponse mutagène liée à une substance a été considérée comme significative après une augmentation de deux fois (ou plus) du nombre de révertants spontanés dans chacune des souches testées.
Statistics:
Non communiquées
Species / strain:
other: S. Typhimurirum TA92, TA98, TA100
Metabolic activation:
without
Genotoxicity:
negative
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
not specified
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Species / strain:
other: S. typhimurium TA 104
Metabolic activation:
without
Genotoxicity:
ambiguous
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
not specified
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Additional information on results:
Non communiqué
Remarks on result:
other: Souches: S. Typhimurium TA92, TA98, TA100
Conclusions:
Interprétation des résultats: ambigu

La partie organique de la substance à enregistrer (2,4-pentanedione) n'a pas montré de réponse mutagène dans les souches de Salmonella typhimurium TA92, TA98 et TA100, respectivement. Dans TA104, les résultats sont ambigus
Executive summary:

La 2,4-pentanedione a été testée pour son activité mutagène potentielle en utilisant le test de mutagénicité bactérienne Salmonella / microsome sans activation métabolique. La 2,4-pentanedione n'a pas montré de réponse mutagène, c'est-à-dire une augmentation d'au moins deux fois du nombre de révertants/plaque par rapport aux témoins non traités dans les souches TA92, TA98 et TA100 de Salmonella typhimurium, respectivement. Avec la souche TA104, le plus grand nombre de révertants/plaque était d'environ 1500. La 2,4-pentanedione a été classé comme «fortement mutagène» avec la souche TA104 dans la gamme de doses examinée (1.9 - 48μmol/plaque). Selon les résultats disponibles, la 2,4-pentanedione a seulement augmenté le nombre de révertants spontanés de la souche TA104 dans la gamme de dose 1.9-10 μmol/plaque. A des concentrations de 10 μmol/plaque et plus, le nombre de révertants déterminés était dans la gamme de contrôle de 400 à 700 révertants/plaque pour cette souche de Salmonella typhimurium particulière. Ainsi, l'augmentation des révertants/plaque ne s'est pas faite selon le principe de dose-réponse. Les résultats de cette étude sont ambigus quant à la mutagénicité de la partie organique de la substance à enregistrer (2,4 -pentanedione).

Endpoint:
in vitro gene mutation study in mammalian cells
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
weight of evidence
Study period:
Jusqu'à 2000
Reliability:
2 (reliable with restrictions)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
study well documented, meets generally accepted scientific principles, acceptable for assessment
Qualifier:
equivalent or similar to guideline
Guideline:
OECD Guideline 476 (In Vitro Mammalian Cell Gene Mutation Test)
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
other: Test de mutation de gène de cellules mammaliènnes
Specific details on test material used for the study:
- Nom de la substance testée: 2,4-Pentanedione
- Etat physique: liquide
- Stabilité dans les conditions de test: stable
Target gene:
Locus du gène HGPRT
Species / strain / cell type:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Details on mammalian cell type (if applicable):
CHO-K1-BH4 (subclone D1)
Additional strain / cell type characteristics:
not specified
Metabolic activation:
with and without
Metabolic activation system:
Mélange S9
Test concentrations with justification for top dose:
- 0.005 - 1.5 mg/L pour les tests sans le mélange d'activation métabolique (S9)
- 0.005 - 1.0 mg/L pour les tests avec le mélange d'activation métabolique (S9)
Vehicle / solvent:
Eau
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
yes
Positive controls:
yes
Positive control substance:
ethylmethanesulphonate
Remarks:
Sans mélande d'activation métabolique (S9)
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
yes
Positive controls:
yes
Positive control substance:
N-dimethylnitrosamine
Remarks:
Avec le mélange d'activation métabolique (S9)
Details on test system and experimental conditions:
Les cellules CHO cultivées (CHO-K1-BH4) ont été traitées en double, à la fois en absence et en présence de S9, avec la substance de contrôle du véhicule (eau), une substance témoin positive appropriée et diverses concentrations de la substance testée. La cytotoxicité a été évaluée 18-24 heures après le traitement. Ensuite, 7 à 10 jours après le traitement, les cellules ont été étalées dans du milieu F-12 de Ham contenant de la 6-thioguanine (2.0 µg/ml) et supplémentées à 5% avec du sérum bovin dialyse. La capacité de formation de colonies des cellules au moment de la sélection du mutant a été évaluée en placant 100 cellules/plaque dans chacune des plaques de culture de 4.60 mm contenant le milieu F-12 (sans 6-thioguanine). Toutes les cultures ont été cultivées à 37 ° C dans une atmosphère humidifiée contenant 5% de C02 pendant 6 à 8 jours supplémentaires pour permettre la croissance des colonies. Les colonies ont ensuite été fixées, colorées et comptées. Les concentrations d'essai ont été sélectionnées sur la base d'une étude préliminaire de cytotoxicité.


Mode d'application: en milieu
Rationale for test conditions:
Non communiqué
Evaluation criteria:
Les critères d'une réponse mutagène positive sont des augmentations de la fréquence de mutations statistiquement significatives liées à la dose à deux concentrations consécutives ou plus; une augmentation reproductible statistiquement significative à une ou plusieurs concentrations. Toutes les analyses statistiques ont été effectuées à l'aide d'un logiciel statistique BMDP, la valeur de probabilité <= 0,05 (unilatérale) correspond au niveau de signification critique.
Statistics:
Les données ont été analysées par la méthode de Irr et Snee après transformation de Box-Cox.
Species / strain:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Metabolic activation:
with and without
Genotoxicity:
negative
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
not specified
Positive controls validity:
valid
Additional information on results:
Facteurs confondants spécifiques au test:
- Effets du pH: aucun rapporté
- Effets de l'osmolalité: aucun rapporté
- Évaporation du milieu: aucune signalée
- Solubilité dans l'eau: soluble
- Précipitation: aucune signalée
- Autres effets confondants: aucun rapporté


Comparaison avec les données de contrôle historique: oui, conforme pour le contrôle de solvant et positif


Informations complémentaires sur la cytoxicité: des concentrations supérieures à 2.0 mg/ml en présence de S9 et de 3.0 mg/ml en l'absence de S9 ont pratiquement tué toutes les cellules.
Remarks on result:
other: Tous les types cellulaires testés
Conclusions:
Interprétation des résultats: test négatif

La partie organique de la substance à enregistrer 2,4-pentanedione n'était pas considéré comme un mutagène actif dans les conditions du système de test CHO.
Executive summary:

La 2,4-pentanedione a été évalué pour son activité génotoxique potentielle en utilisant le test Mutation de l'ovaire de hamster chinois (CHO) (HGPRT)

Des essais préliminaires ont été réalisés pour déterminer une gamme appropriée de concentration d'essai dans laquelle les concentrations les plus élevées ne tueraient pas plus de (environ) 90% des cellules CHO traitées (CHO-K1-BH4 (sous-clone D1)). Dans ces expériences préliminaires, des concentrations supérieures à 2.0 mg/ml en présence de S9 et 3.0 mg/ml en l'absence de S9 ont pratiquement tué toutes les cellules. Les doses choisies pour le test définitif étaient de 0.005-1.5 mg/ml et de 0.005-1.0 mg/ml en l'absence et en présence du mélange S9, respectivement. Des témoins positifs (éthylèneméthanesulfonate, 200 μg/ml, avec S9, diméthylnitrosamine 200 μg/ml sans S9) et des témoins (H2O) ont également été inclus pour déterminer les effets génotoxiques liés à la 2,4-pentanedione, selon le nombre de mutants/10e6 cellules viables/culture dosée. Toutes les incubations ont été effectuées en duplicat. Les cellules ont été exposées à au moins cinq concentrations qui ont permis une survie cellulaire suffisante pour l'évaluation de la survie et la quantification des mutants. Les cellules ont été exposées pendant 5 h dans des tests avec et sans activation métabolique. La fraction mutante a été déterminée après une période de sous-culture de 9 à 12 jours pour permettre l'expression du phénotype mutant. L'activation métabolique par homogénat de foie S9 a été préparé à partir de rats mâles Sprague-Dawley induits par Aroclor 1254.

La 2,4-pentanedione n'a produit aucune augmentation reproductible ou statistiquement significative de l'incidence des mutations des cellules CHO à des concentrations comprises entre 0.005 et 1.5 mg/ml dans les tests sans système d'activation métabolique S9 ou de 0.005 à 1.0 mg/ml avec le système d'activation métabolique S9. Les cultures aléatoires avec des valeurs mutantes accrues se situaient dans la plage de variabilité typique pour ce test dans le laboratoire testeur et les augmentations ne sont pas apparues comme reproductibles dans les culturesà chaque dose. En conclusion, la 2,4-pentanedione n'est pas considérée comme un mutagène actif dans les conditions du système de test CHO.

Endpoint:
in vitro cytogenicity / chromosome aberration study in mammalian cells
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
key study
Study period:
Jusqu'à 2000
Reliability:
2 (reliable with restrictions)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
study well documented, meets generally accepted scientific principles, acceptable for assessment
Qualifier:
equivalent or similar to guideline
Guideline:
OECD Guideline 473 (In Vitro Mammalian Chromosome Aberration Test)
Deviations:
no
Principles of method if other than guideline:
La 2,4-pentanedione a été évalué pour son activité génotoxique potentielle en utilisant le système de test d'aberration chromosomique in vitro de Ham-ster Ovary (CHO) chinois. Les concentrations testées de 2,4-pentanedione variaient de 0.01 mg/ml à 0.03 mg/ml sans activation métabolique (mélange S9) et de 0.02 mg/
ml à 0.1 mg/ml avec un système d'activation métabolique S9 de foie de rat.

Les gammes de concentration testées ont été choisies sur la base d'un test de cytotoxicité préliminaire et la dose la plus élevée a produit environ 40 à 60% d'inhibition mitotique. Les trois doses les plus élevées qui n'ont pas produit une inhibition cytotoxique excessive des cellules mitotiques ont été évaluées pour l'incidence des aberrations chromosomiques dans le test définitif.
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
other: in vitro mammalian chromosome aberration test (migrated information)
Specific details on test material used for the study:
- Nom de la substance testée: 2,4-Pentanedione
- Etat physique: liquide
- Stabilité dans les conditions de test: stable
Target gene:
Pas applicable
Species / strain / cell type:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Details on mammalian cell type (if applicable):
CHO-K1-BHA (Subclone 1)
Additional strain / cell type characteristics:
not specified
Metabolic activation:
with and without
Metabolic activation system:
Mélange S9
Test concentrations with justification for top dose:
- 0.01-0.03 mg/ml sans le mélange d'activation métabolique S9
- 0.02-0.10 mg/ml avec le mélange d'activation métabolique S9
Vehicle / solvent:
Eau
Untreated negative controls:
not specified
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
cyclophosphamide
Remarks:
Avec systéme d'activation métabolique (S9)
Untreated negative controls:
not specified
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
no
Positive controls:
yes
Positive control substance:
triethylenemelamine
Remarks:
Sans système d'activation métabolique (S9)
Details on test system and experimental conditions:
Mode d'application: en milieu;

Durée:
- Durée d'exposition: 6 à 10 heures sans activation métabolique, 2 heures avec activation métabolique

Inhibiteur spindle (dosages cytogénétiques): Colchicine
Colorant (pour les dosages cytogénétiques): Giemsa

Nombre de réplications: 2

Nombre de cellules évaluées: 50 cellules/culture/échantillon

Détermination de la cytotoxicité: index mitotique, efficacité de clônage, croissance totale relative
Rationale for test conditions:
Non communiqué
Evaluation criteria:
Un résultat de test positif a été interprété par l'obtention de différences du témoin au niveau de p <0.05 au moins sur la concentration du test, avec indication d'un effet lié à la concentration des expositions ou de la reproductibilité entre les cultures dupliquées.
Statistics:
Les analyses des données d'essai ont utilisé le test exact Fisher'r (unilatéral) pour déterminer la signification statistique des différences entre les populations testées et témoins.
Ce test statistique a été considéré comme approprié pour l'analyse des données car il s'agit d'un test indépendant de la distribution et les données cytogénétiques varient souvent d'une distribution normale requise pour les analyses paramétriques. Les niveaux de différences statistiques sont indiqués par les lettres: a = 0.05> p> 0.01; b = 0.01> p> 0.,001; c = p <0.001.
Species / strain:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Metabolic activation:
with and without
Genotoxicity:
ambiguous
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
not specified
Positive controls validity:
valid
Remarks on result:
other: Tous les types cellulaires testés
Conclusions:
Interprétation des résultats: ambigu

La 2,4-pentanedione ne peut pas être définitivement classée en ce qui concerne la clastogénicité potentielle dans les test avec ou sans activation métabolique.
Executive summary:

La 2,4-pentanedione a été évaluée quant à son activité génotoxique potentielle en utilisant le système de test d'aberration chromosomique in vitro avec des cellules ovariennes de hamster chinois (CHO) avec et sans activation métabolique. Les concentrations de 2,4-pentanedione testées n'ont pas induit de cytotoxicité excessive ni d'inhibition des cellules CHO mitotiques (CHO-K1-BH4 (sous-clone D1)). Un contrôle négatif simultané (milieu de culture), un contrôle positif (15 μg de cyclophosphamide/ml avec activateur métabolique: mélange S9 et 1.5 μg de triéthylènamine/ml sans S9) et des contrôles de véhicule (eau de solvant) ont été testés. Pour l'activation métabolique, un homogénat de foie S9 a été utilisé, préparé à partir de rats mâles Sprague-Dawley induits par Aroclor 1254. La période de traitement était de 2 heures (cellules récoltées à 6 ou 10 heures après le début de l'exposition) avec et 6 ou 10 heures sans activation métabolique. Les chromosomes ont été préparés par des méthodes standard. Lorsque cela était possible, un total de 50 cellules/culture/intervalle de récolte a été examiné pour l'altération chromosomique en utilisant des cultures en duplicat pour la substance testöe et les contrôles. Au moins 5 doses ont été testées avec et sans activation métabolique. L'incidence des dommages chromosomiques a été déterminée pour les 3 doses les plus élevées qui n'ont pas produit d'inhibition cytotoxique excessive de la division cellulaire (mitose). Le nombre d'aberrations de type chromatide et chromosomique, le nombre total d'aberrations pour 50 cellules examinées (avec et sans inclusion de lacunes dans le total) et le niveau de signification statistique ont été déterminés.

Une augmentation significative mais faible des aberrations (bris de chromatides simples prédominants) a été observées seulement à une dosedans les deux tests effectués avec et sans activation métabolique. En plus de ce manque de reproductibilité des effets positifs (test positif), aucune augmentation liée à la dose des aberrations n'a été observée dans la gamme des doses évaluées dans cette expérience. En raison des incohérences dans les données déterminées et de la nature simple des lésions observées, la substance d'essai n'a pas pu être définitivement classée en ce qui concerne la clastogénicité potentielle dans les tests avec ou sans activation. Un test supplémentaire à intervalles d'échantillonnage optimisés a donc été réalisé pour clarifier le potentiel clastogène de la 2,4-pentanedione.

Endpoint:
in vitro cytogenicity / chromosome aberration study in mammalian cells
Type of information:
experimental study
Adequacy of study:
key study
Study period:
Jusqu'à 2000
Reliability:
2 (reliable with restrictions)
Rationale for reliability incl. deficiencies:
study well documented, meets generally accepted scientific principles, acceptable for assessment
Qualifier:
equivalent or similar to guideline
Guideline:
OECD Guideline 473 (In Vitro Mammalian Chromosome Aberration Test)
Deviations:
no
Principles of method if other than guideline:
Étude d'aberration chromosomique (AC); Les concentrations de la substance testée utilisées dans l'essai n'ont pas produit une inhibition cytotoxique excessive des cellules mitotiques dérivée des études préliminaires. Les trois doses les plus élevées ont été sélectionnées pour la détermination de l'incidence des aberrations chromosomiques. Les chromosomes ont été préparés par des méthodes standard et colorés en utilisant la technique de fluorescence plus Giemsa (FPG) qui est utilisée pour la visualisation des échanges de chromatides sœurs. Les cellules CHO ont été exposées à TS et à des témoins appropriés pendant une période de 6 heures en l'absence d'activation métabolique. Le potentiel génotoxique indirect, nécessitant une activation métabolique par l'homogénat S9 du foie, a été étudié avec une période d'exposition de 2 heures au système d'activation TS et S9. Après la période d'exposition, les cellules ont été rincées, du milieu frais a été ajouté et les cellules ont ensuite été prélevées 14 ou 22 heures après le début de l'exposition pour un test effectué avec ou sans activation. Le cyclophosphamide et la triéthylmélamine ont été utilisés comme agents de contrôle positif pour garantir la fiabilité et la sensibilité du système de test pour détecter les clastogènes dépendants de l'activation métabolique et indépendants.
GLP compliance:
not specified
Type of assay:
other: in vitro mammalian chromosome aberration test (migrated information)
Specific details on test material used for the study:
- Nom de la substance testée: 2,4-Pentanedione
- Etat physique: liquide
- Stabilité dans les conditions de test: stable
Target gene:
Pas applicable
Species / strain / cell type:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Details on mammalian cell type (if applicable):
CHO-K1-BHA (Subclone 1)
Additional strain / cell type characteristics:
not applicable
Metabolic activation:
with and without
Metabolic activation system:
Mélange S9
Test concentrations with justification for top dose:
- 0.04-0.12 mg/ml sans le mélange d'activation métabolique S9
- 0.06-0.14 mg/ml avec le mélange d'activation métabolique S9
Vehicle / solvent:
Eau
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
not specified
Positive controls:
yes
Positive control substance:
cyclophosphamide
Remarks:
Avec systéme d'activation métabolique (S9)
Untreated negative controls:
yes
Negative solvent / vehicle controls:
yes
True negative controls:
not specified
Positive controls:
yes
Positive control substance:
triethylenemelamine
Remarks:
Sans système d'activation métabolique (S9)
Details on test system and experimental conditions:
Mode d'application: en milieu;

Durée:
- Durée d'exposition: 6 heures sans activation métabolique, 2 heures avec activation métabolique
- Temps d'expression (cellules dans le milieu de croissance): 14/22 h

Remarque: Les cellules ont été cultivées pendant 10 heures supplémentaires après le temps de division normal de 12 heures (la substance testée a produit un retard significatif dans le cycle de division cellulaire), donnant ainsi aux cellules une période de 22 heures pour récupérer et compléter la synthèse d'ADN. Cette période de croissance prolongée a permis d'évaluer des doses plus élevées et a donné aux cellules suffisamment de temps pour répliquer l'ADN, ce qui est nécessaire pour l'observation des types de dommages chromosomiques dépendants de la synthèse. Prolonger la période d'échantillonnage chromosomique pour compenser les retards du cycle cellulaire a augmenté la sensibilité du système de test et a démontré sans équivoque que la substance testée produisait des abbérations chromosomiques lors du test de potentiel clastogène direct dans les cellules CHO.

Inhibiteur spindle (dosages cytogénétiques): Colchicine
Colorant (pour les dosages cytogénétiques): Fluorescence plus Giemsa (FPG)

Nombre de réplications: 2

Nombre de cellules évaluées: 50

Détermination de la cytotoxicité: index mitotique
Rationale for test conditions:
Non communiqué
Evaluation criteria:
Un résultat de test a été considéré comme positif si au moins une concentration testée a produit une augmentation statistiquement significative des aberrations chromosomiques avec une augmentation de la concentration de la substance testée.
Statistics:
Test exact de Fisher (one tailed)
Species / strain:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Metabolic activation:
without
Genotoxicity:
positive
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Species / strain:
Chinese hamster Ovary (CHO)
Metabolic activation:
with
Genotoxicity:
negative
Cytotoxicity / choice of top concentrations:
cytotoxicity
Vehicle controls validity:
valid
Untreated negative controls validity:
valid
Positive controls validity:
valid
Additional information on results:
Facteurs confondants spécifiques au test:
- Effets du pH: non rapporté
- Effets de l'osmolalité: non rapporté
- Évaporation du milieu: non rapporté
- Solubilité dans l'eau: soluble
- Précipitation: non rapporté
- Autres effets confondants: non signalés

Comparaison avec les données de contrôles historiques: en ligne avec les données de contrôle historiques
Conclusions:
Interprétation des résultats: test négatif avec activation métabolique; test positif sans activation métabolique

Dans les tests effectués sans l'activation métabolique (sans mélange S9), les trois niveaux de dose de la substance testée ont produit des augmentations significatives du nombre d'abbérations chromosomiques.
En revanche, les cellules testées dans des conditions physiologiques plus réalistes (à savoir en présence d'un système d'acitvation métabolique: mélange S9) n'ont pas montré d'augmentation du nombre d'abbérations chromosomiques par rapport aux valeurs des cultures témoins.
La substance testée est considérée comme hautement clastogène (rupture des chromosomes) pour les cellules CHO dans des tests réalisés sans activation métabolique mais elle n'est pas apparue comme ayant des effets clastogènes lorsqu'elle a été testée en présence d'une activation métabolique dans les conditions de ce système de test in vitro. La 2,4-pentanedioen possède un potentiel clastogène direct dans les conditions de ce système de test in vitro.
Executive summary:

Dans cette étude, le potentiel clastogène de la 2,4-pentanedione a été évalué en utilisant des intervalles d'échantillonnage déterminés à partir d'essais préliminaires pour définir les retards du cycle cellulaire. Des tests préliminaires effectués en l'absence d'activation métabolique (S9), en utilisant une période de traitement de 6 heures, ont indiqué que la 2,4-pentanedione induisait un retard significatif dans le cycle de la division cellulaire. Dans les essais sans activateur métabolique (S9), les cellules ont été traitées pendant 6 heures et ont été échantillonnées pour les chromosomes 22 heures après le début du traitement. Dans les tests effectués avec l'activation métabolique, les cellules ont été traitées pendant 2 heures et les chromosomes ont été échantillonnés 14 heures après le début du traitement.

Les concentrations d'essai ont été choisies sur la base des données de cytotoxicité observées dans les expériences précédentes avec des cellules CHO et sur des données de cytotoxicité supplémentaires acquises dans le test préliminaire pour des temps d'échantillonnage optimaux. Les concentrations testées de 2,4-pentanedione se situaient entre 0.04 et 0.12 mg/ml sans mélange S9 et entre 0.06 et 0.14 mg/ml avec le mélange (S9). Les trois doses les plus élevées qui n'ont pas produit d'inhibition cytotoxique excessive des cellules mitotiques ont été utilisées pour évaluer l'incidence des aberrations chromosomiques.

Dans les tests effectués sans activation, les trois doses de 2,4-pentanedione testées ont induit des augmentations significatives du nombre d'aberrations chromosomiques. La proportion de cellules présentant des aberrations chromosomiques variait de 95 à 100%, ce qui était hautement statistiquement significatif par rapport à une incidence de 3% de cellules aberrantes chez les témoins négatifs. En outre, une grande proportion de cellules gravement endommagées, constituées de multiples ruptures et de réarrangements complexes, ont été observées aux trois niveaux de dose.

En revanche, les cellules testées en présence du système d'activation métabolique S9 n'ont pas montré d'augmentation du nombre d'aberrations chromosomiques par rapport aux valeurs des cultures témoins. Les cassures et les fragments de chromatides simples étaient les types prédominants d'aberrations observées. Cependant, les fréquences de ces aberrations se situaient dans la gamme d'incidence spontanée de ce système de test au laboratoire.

La 2,4-pentanedione est considéré comme hautement clastogène (rupture des chromosomes) pour les cellules de l'ovaire de Hamster chinois dans le test effectué sans activation mais elle n'apparait pas comme ayant des effets clastogènes quand elle est testée en présence d'un activateur métabolique dans les conditions de ce système de test in vitro.

Endpoint conclusion
Endpoint conclusion:
adverse effect observed (positive)

Genetic toxicity in vivo

Description of key information

Pas applicable

Endpoint conclusion
Endpoint conclusion:
no study available

Mode of Action Analysis / Human Relevance Framework

Pas applicable

Additional information

Justification for classification or non-classification

Sur la base de l'évaluation susmentionnée du potentiel génotoxique in vitro de la substance à enregistrer, la substance à enregistrer (Acétylacétonate de Nickel) doit être classifiée comme mutagène sur les cellules germinales catégorie 2 ("Avertissement -H341: Susceptible d'induire des anomalies génétiques"),conformément au CLP (règlement (CE) n ° 1272/2008 du Parlement européen et du Conseil) en tant que mise en œuvre du système UN-GHS dans l'Union Européenne. Le tableau ci-dessous résume les différents éléments d’étiquetage relatifs à la génotixicité de l’acétylacétonate de Nickel:

Éléments d´étiquetage

Type

Pictogramme GHS de danger

GHS08 Dangereux à long terme

Mention d’avertissement

Attention

Mention de danger

H341:Susceptible d'induire des anomalies génétiques

Conseil de prudence

Prévention (agent mutagène)

P201

P202

P280

Intervention ( 

agent mutagène

)

P308 + P313

Elimination (agent mutagène

)

P501